犬代謝籠採集尿液方法

實驗動物尿液採集的標準操作規程(SOP) 關鍵詞：尿液採集 操作規程 目的：採集各種實驗動物的尿液,以用於實驗 主體內容： 常用的採集方法較多，一般在實驗前需給動物灌服一定量的水。

(一)代謝籠法：此法較常用，適用於大、小鼠。將動物放在特製的籠內。動物排便時，可以透過籠子底部的大小便分離漏斗將尿液與糞便分開，達到採集尿液的目的。由於大、小鼠尿量較少，操作中的損失和蒸發，各鼠膀胱排空不一致等原因，都可造成較大的誤差，因此一般需收集5小時以上的尿液，最後取平均值。(二)導尿法：常用於雄性兔、狗。動物輕度麻醉後，固定於手術檯上。由尿道插入導尿管(頂端應用液體石蠟塗抹)，可以採到沒有受到汙染的尿液。(三)壓迫膀胱法：在實驗研究中，有時為了某種實驗目的，要求間隔一定的時間，收集一次尿液，以觀察藥物的排洩情況。動物輕度麻醉後，實驗人員用手在動物下腹部加壓，手要輕柔而有力。當加的壓力足以使動物膀胱括約肌松馳時，尿液會自動由尿道排出。此法適用於兔、狗等較大動物。(四)輸尿管插管法：動物麻醉後，固定於手術檯上。剪毛、消毒，於恥骨聯合上緣之上在正中線做面板切口(長約3～4cm),沿腹中線切開腹壁及腹膜,找到膀胱翻出腹外。辨認清楚輸尿管進入膀胱背側的部位(膀胱三角)後，細心地分離出兩側輸尿管，分別在*近膀胱處穿線結紮。在離此結紮點約2cm 處的輸尿管近腎段下方穿一根絲線。用眼科剪在管壁上剪一斜向腎側的小切口，分別插入充滿生理鹽水的細塑膠管( 插入端剪成斜面)，用留置的線結紮固定。可見到尿滴從插管中流出( 頭幾滴是生理鹽水)，塑膠管的另一端與帶刻度的容器相連或接在記滴器上，以便記錄尿量。在適用過程中應經常活動一下輸尿管插管，以防阻塞。在切口和膀胱處應蓋上溫溼的生理鹽水紗布。(五)膀胱插管法：腹部手術同輸尿管插管。將膀胱翻出腹外後，用絲線結紮膀胱頸部，阻斷它同尿道的通路。然後在膀胱頂部避開血管剪一小口，插入膀胱漏斗，用絲線做以荷包縫合固定。漏斗最好正對著輸尿管的入口處。注意不要緊貼膀胱後壁而堵塞輸尿管。下端接橡皮管插入帶刻度的容器內以收集尿液。(六)穿刺膀胱法：動物麻醉後固定於手術檯上，在恥骨聯合之上腹正中線剪毛，消毒後進行穿刺，入皮後針頭應稍改變一下角度，以避免穿刺後漏尿。(七)剖腹採尿法：同穿刺法做術前準備，面板準備範圍應大一點。剖腹暴露膀胱，操作者的左手用無齒小平鑷夾住一小部分膀胱，右手持針在小鑷夾住的膀胱部位直視穿刺抽取尿液。可避免針頭貼在膀胱壁上而抽不出尿液。(八)反射排尿法：適用於小鼠，因小鼠被人抓住尾巴提起時排便反射比較明顯。故需採取少量尿液時，可提起小鼠，將排出的尿液接到帶刻度的容器內。

在應用抗菌藥物之前或停藥1~2天后採集標本，最好採集清晨第一次尿液或者採集在膀胱內貯留6~8小時的尿液。尿液標本的採集一定要防止尿道口汙物、糞便、陰道分泌物的汙染，給患者明確交代。